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乳腺癌细胞p16基因的研究 1

来源:医学杂志 2006-07-16 20:34:16 

   摘 要 目的:探讨p16基因在乳腺癌中的突变形式和频率以及有效的检测手段。方法:采用细胞培养,反复贴壁法纯化人乳腺癌细胞,经多聚酶链反应-单链构象多态性(PCR-SSCP)分析技术,对14例纯化乳腺癌细胞标本、14例新鲜未纯化标本和27例石蜡包埋标本及相应的癌旁乳腺组织标本的p16基因突变率进行了对比性研究。结果:纯化的乳腺癌细胞组p16基因突变率为42.9%(6/14),而新鲜未纯化细胞组、石蜡包埋细胞组及癌旁乳腺细胞组的p16基因突变率分别为7.1%、7.4%、4.9%,纯化乳腺癌细胞组的突变检出率显著高于其它3组,差异有显著性意义(P<0.01),其它3组突变检出率差异无显著意义(P>0.05)。结论:在原发性乳腺癌中p16基因的纯合性缺失和小片段基因丢失可能是其失活的主要模式;纯化的癌细胞标本可大大提高p16基因的突变检出率。

  我们采用细胞培养,反复贴壁法纯化人乳腺癌细胞,经多聚酶链反应-单链构象多态性(PCR-SSCP)分析技术对14例纯化乳腺癌细胞标本,14例新鲜未纯化乳腺癌标本,27例中性福尔马林固定、石蜡包埋的乳腺癌标本及相应的癌旁乳腺组织标本的p16基因的3对外显子进行了检测。以探讨p16基因在乳腺癌中的突变形式和频率以及有效的检测手段。

  资料与方法

  1.标本:41例原发性乳腺癌标本为我院1997~1998年的手术患者,均为女性;年龄35~68岁。其中27例乳腺癌组织常规取材,经中性福尔马林固定12 h后,石蜡包埋,连续切片11张,1张行HE染色,10张经充分剔除周围非肿瘤组织后,留置作DNA抽提;14例术中取癌组织冰冻病理检查,对照HE染色,选取无坏死的肿瘤细胞集中部分取材,立即置入Hank′s液中,4℃冰箱暂存不超过24 h。所有病例均取癌旁乳腺组织标本置-20℃冰箱冻存。

  2.实验材料与方法:12孔、24孔细胞培养板;CO2细胞培养恒温箱;倒置微生物显微镜;-20℃、-80 ℃低温冰箱;层流超净工作台;PCR仪;DYY-Ⅲ型稳压电泳仪;DYY-Ⅲ6型转移电泳仪;Hoefer mighty SmallⅡ电泳系统;紫外分光光度计。PCR引物由中科院上海植物生理所植物分子遗传实验室合成。引物序列参见文献[1,2]。

  细胞培养、反复贴壁纯化癌细胞法按文献[3]方法。模板DNA的制备按文献[4,5]方法。所有DNA样本经紫外分光光度检测波长为260 nm及230 nm处的OD值,OD值均大于1.8。多聚酶链反应(PCR)按文献[2,5]方法。PCR产物在2%琼脂糖凝胶中电泳、鉴定。PCR产物的SSCP分析按文献[6]的方法。

  3.统计学方法:用Fisher′s精确概率计算法(sas6.08),结果经t检验。

  结 果

  实验中建立了稳定的p16基因1~3外显子(exon)片断的PCR-SSCP检测体系。在27例石蜡包埋原发性乳腺癌标本中,1例p16基因exon1~3未见相应的扩增片段;1例exon 3未见扩增片段。14例新鲜未纯化癌标本中,1例未见exon1,1例未见exon 3相应的扩增片段。14例纯化癌细胞标本中,1例exon1~3均未见扩增片段,2例未见exon 1~2扩增片段,2例未见exon 3扩增片段。在全部扩增阳性癌标本中,仅有1例纯化癌细胞标本的p16基因第2 exon出现异常SSCP泳动条带。

  纯化癌细胞组p16基因突变率为42.9%(6/14),石蜡包埋癌细胞组、新鲜未纯化癌细胞组及癌旁乳腺组织细胞组分别为7.4%、7.1%、4.9%,纯化癌细胞组突变检出率显著高于其他3组,差异有显著性意义(P<0.01),其他3组之间差异无显著意义(P>0.05)。

  讨 论

  p16基因位于人类染色体9q21,有2个内含子和3个exon组成[1],是一种重要的肿瘤抑制基因。了解乳腺癌患者p16基因的状态,不仅可以分析它们之间的关系和作用机制,更重要的是对乳腺癌的病因学、生长特性、诊断和临床治疗诸方面的研究具有指导意义。

  Geradts等[7,8]用免疫组织化学法发现乳腺癌细胞p16基因蛋白缺失,总异常率为49%。郭山春等[9,10]报道乳腺癌中p16蛋白缺失率68.2%,且缺失率与PCNA指数及淋巴结转移呈明显正相关。以上研究表明p16基因状态与乳腺癌的病理过程有关,p16基因失活将导致细胞周期调节环路失调,细胞过度增殖,从而成为乳腺癌发生的直接原因。检测p16基因的活性状态,能判断乳腺癌增殖、侵袭和转移的能力。

  乳腺癌属体表肿瘤,一般发现及治疗均较早,肿块体积小。癌组织与乳腺良性增生性病变及正常乳腺组织交叉分布,取材不易排除间质细胞干扰。既往所采用的石蜡包埋和未纯化癌组织标本,癌组织易受间质细胞污染,且癌细胞中的p16基因纯合性缺失常被掩盖。

  因此,p16基因突变的检出率常常低于实际的突变率。为了较精确地评估乳腺癌中p16基因突变的形式及频率,我们应用短期培养、反复贴壁法纯化乳腺癌细胞[3],分次留置标本进行PCR-SSCP检测p16基因缺失突变率。观察到14例新鲜纯化乳腺癌癌细胞标本有5例纯和性缺失,1例突变,其突变检出率显著高于未纯化的乳癌标本(P<0.05)及癌旁乳腺组织标本(P<0.01)。以上结果与一组成胶质细胞肿瘤的研究相似。表明纯化乳腺癌细胞能提高p16基因突变的检出率。并且在细胞培养板孔中操作简单,易于动态观察细胞的变化,便于大量标本的同时检测;短期培养可排除肿瘤细胞在体外培养过程中造成的p16基因突变的可能性,较真实地反映了乳腺癌的生物学特点,值得在临床中推广应用。

  作者单位:王本忠 230022 合肥,安徽医科大学附属医院普外科

  朱新生 230022 合肥,安徽医科大学附属医院普外科

  参考文献

  [1]Kamb A, Gruis NA,Weaver F,et al.A cell cycle regulator potentially involved in genesis of many tumor types. Science,1994,264:436-440.

  [2]Ohta M,Nagai H,Shimizl M,et al.Rarity of somatic and germline mutations of the cyclin-dependent kinase 4 inhibitor gene,CDK41,in melanoma.Cancer Res,1994,54:5269-5272.

  [3]王蘅文,主编.实验肿瘤学基础.第1版.北京:人民卫生出版社,1992.25-26.

  [4]姜泊,张亚历,周殿元,主编.分子生物学常用方法.第1版.北京:人民军医出版社,1996.111-112.

  [5]林万明,主编.PCR技术操作和应用指南.

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